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基因組甲l基化水平(Methyl ati on Content)的分析:
1.高l效液相色譜(Hi gh-performanceLi qui dChromatography, HPLC)HPLC是- -種比較傳統的方法,是根據DNA或蛋白分子量和構象的不同而使其加以分離。由于在動態相和靜態相下分子的光吸收度并不相同而加以定量。隨著系統的壓強的增加,其分辨率增l高。故而能夠定量測定基因組整體水平DNA甲l基化水平。C使用Imageproplus軟件對A蛋白灰度檢測,A蛋白表達變化統計圖。該方法由Ruo等1980年首l次報道。過程是將DNA樣品先經鹽酸或氫l氟酸水解成堿基,水解產物通過色譜柱,結果與標準品比較,用紫外光測定吸收峰值及其量,計算5 mC/(5mC+5C)的積分面積就得到基因組整體的甲l基化水平。這是一種檢測DNA甲l基化水平的標準方法。
2.高l效毛細管電泳法(Hi gh-per formance Capillary Electrophoresis, HPCE)這是一-種利用窄孔熔融石英毛細管來從復合物中分離不同化學組分的技術。其基礎是在強電場下不同分子的由于其所帶電荷,大小,結構以及疏水性等不同而相互分開。ELISA是一種結合抗原、抗ti特異性反應和酶對底物高xiao催化作用的高敏感性免yi學實驗技術。用HIPCE方法處理DNA水解產物來確定5mC水平,簡便,經濟且敏感性高。
凝膠阻滯遷移電泳檢測服務(EMSA)
凝膠遷移或電泳遷移率實驗(electrophoretic mobility shift assay,EMSA)是一種研究DNA/RNA結合蛋白和其相關的DNA/RNA結合序列相互作用的技術,可用于定性和定量分析。依據實驗需要,設計標記探針、非標記探針、蛋白特異性抗ti等參照物,基于DNA-蛋白質或RNA-蛋白質復合體在聚bing烯酰胺凝膠電泳(PAGE)中有不同遷移率的原理,當轉錄因子與特異的DNA或RNA結合后,其在PAGE中的遷移率將小于未結合核蛋白轉錄因子的DNA,從而檢測到活化的與DNA或RNA結合的蛋白轉錄或調節因子。microRNA芯片:RNA干擾(RNAInterference,RNAi)現象是一種進化上保守的抵御轉基因或外來病毒qin犯的防御機制。二、操作步驟:
1. 所有在純化系統里使用的溶液當日都需要經過 0.22μm 的濾膜抽濾、脫氣處理;保存 4℃ 冰箱里的緩沖液若要在室溫使用需恢復至室溫后抽濾脫氣;
2. 樣品上柱純化前,需先濾膜過濾,少量樣品可用離心(13000rpm,10min);
3. 依次用水、緩沖液洗泵;設置流速和柱前警報壓(壓力值參閱層析柱及填料說明書,取較小的一個大耐受壓力)。防止柱中進入氣泡,影響分離效果;
4. 當柱子限壓在 0.3MPa,或者在限壓狀態下流速很低時,pH valve 中的 Restirtor 可以切換成 Off line,即顯示 By-pass 狀態;
5. 當需要通過儀器上樣環上樣時,將 W1 閥口處換成帶透明短軟管的閥門,從此處閥門位通過倒吸樣品上樣;
6. 進樣閥「Inject」為上樣狀態。上樣結束可將進樣閥切換回「Load」狀態。并用純水認真清洗上樣環至少 3 次;將 W1 閥口處換回原來接頭閥門。
7. 純化結束后,用純水清洗泵和平衡柱子;再用 20% 的乙醇清洗泵以及系統。長期不用,層析柱應保存在 20% 的乙醇中,泵放置在 20% 乙醇中;
8. 實驗結束后及時傾倒廢液瓶里的廢液;
20.Primer設計的基本原則是什么?
答:引物設計的下列原則供您參考。
◆引物長度一般在18-35mer。
◆G-C含量控制在40-60%左右。
◆避免近3'端有酶切位點或發夾結構。
◆如果可能避免在3'端5個堿基有2個以上的G或C。
◆如果可能避免在3'端1個堿基為A。
◆避免連續相同堿基的出現,特別是要避免GGGG或更多G出現。
◆退火溫度Tm控制在 58-60C 左右。
◆如果是設計點突變引物,突變點應盡可能在引物的中間。
21.為什么引物的OD260/OD280小于1.5 ?
答:引物應該全是DNA,但是OD260/OD280的比值為什么那么低,怎么會有蛋白質污染?引物化學合成,哪里有機會污染到蛋白質?需要指出的是OD260/OD280的比值不能用來衡量引物的純度。OD260/OD280的比值過低一般是由于引物中C/T 的含量比較高所致。下表是一個20mer 同聚體引物的OD260/OD280的比值,清楚表明OD260/OD280的比值與引物的堿基組成密切相關。隨后設計BSP引物進行PCR,在擴增過程中尿嘧定全部轉化為胸腺嘧定,zui后對PCR產物進行測序就可以判斷CpG位點是否發生jia基化,稱為BSP-直接測序法。